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Milieu de culture pour levures
YPD
pour 1 litre |
pour 2 litres |
|
1% yeast extract |
10 g |
20 g |
2% Bacto-peptone |
20 g |
40 g |
2% Glucose |
20 g |
40 g |
YPG
Idem au YPD excepté que le sucre est remplacé par 3% de glycérol. C'est le milieu le plus simple pour verifier le bon fonctionnement des mitochondries.
pour 1 litre |
pour 2 litres |
|
1% yeast extract |
10 g |
20 g |
2% Bacto-peptone |
20 g |
40 g |
3% Glycerol |
30 g |
60 g |
SD
pour 1 litre
|
Remarque |
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Yeast nitrogen base (sans acides aminés, sans hydrates de carbones, sans sulfate d'ammonium) |
1.7 g
|
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Sulfate d'ammonium |
5 g
|
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Glucose (2 % final) |
20 g
|
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Drop out mix (mélange d'acides aminés) |
2 g
|
Pour les boites SD-Ade (sans adénine), utiliser le dropout -Ade | |
Agar |
20 g
|
|
Milieu de culture pour bactéries
LB broth
pour 1 litre |
pour 2 litres |
|
Yeast extract |
10 g |
20 g |
Triptone |
5 g |
10 g |
NaCl |
10 g |
20 g |
PCA
pour 1 litre |
pour 2 litres |
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Peptone de caséine |
5 g |
10 g |
Extrait de levure |
2.5 g |
5 g |
Glucose |
1 g |
2 g |
Agar | 15 g | 30 g |
Solutions d'antibiotiques
Pour les milieux solides: les antibiotiques sont ajouté dans le milieu après sa stérilisation en ayant pris soin de laisser ce milieu se refroidir (environ 55°C) juste avant de couler les boîtes.
Les antibiotiques dissous dans l'eau sont stérilisés par filtration.
Antibiotique |
solution stock |
solvant |
concentration usuelle d'utilisation
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Ampicilline |
100 mg/ml |
eau |
100 µg/ml |
Chloramphenicol |
30 mg/ml |
ethanol |
30 µg/ml |
Kanamycine |
50 mg/ml | eau | 50 µg/ml |
Tétracycline |
20 mg/mg | eau | 25 µg/ml |
Streptomycine |
100 mg/ml | eau | 200 µg/ml |
Solution de X-Gal
Solution stock: 40 mg/ml dans du dimethylformamide